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La fermentation des solutions aqueuses
L'étape de fermentation anaérobie est effectuée dans une fermentation L 3 réservoir avec plusieurs prises d'échantillon des installations. Pour optimale conditions de fonctionnement, la cuve de fermentation a des contrôles de température et le régime régulé agitateur. Comme matière première, l'extrait aqueux à partir du test d'extraction ont été utilisées dans chaque lot. Avant l'addition de cet extrait aqueux à la cuve de fermentation, de résidus solides ont été éliminés en utilisant un tamis vibrant ayant une taille de maille de 0,5 mm. Après cela, le phosphate d'ammonium (3,2 g / L), du sulfate de potassium, On a ajouté (1 g / L) et de sulfate de magnésium (1,8 g / litre) sous forme inorganique nutriments sur la solution aqueuse précédente. Ensuite, le pH a été ajusté à 3,5-4, en utilisant l'acide sulfurique dilué. La solution résultante a été stérilisée par chauffage jusqu'à son point d'ébullition puis refroidi à 35°C. Cette solution a été introduite dans le réacteur de fermentation thermostats à 35° C et le mélange réactionnel a été agité 125 tours par minute. Gratuit les cellules de S. cerevisiae (15 g / L) ont été utilisés en tant que levure pour le sucre en éthanol conversion. L'évolution du procédé de fermentation a été déterminée par la mesure de la densité de l'hydro-alcoolique des solutions obtenues et par chromatographie en phase gazeuse en utilisant une colonne HP-INNOWax (30 m x 0,53 mm x 0,25 lm, Agilent), dans les conditions suivantes: température programme: 28 °C, 6 min; 15 °C / min, 200 °C; 200 °C, 2 min; Divisé rapport: 50/1; injecteur: 200 °C; Détecteur: 260 °C. Les monosaccharides et oligosaccharides dans le bouillon de fermentation ont été semi-quantitative analysés par HPLC en utilisant une CarboPac PAl-PG1 colonne, un PED, Dionex 2010 i, 6,0 g / L NaOH. La croissance microbienne à l'aide Les mesures de la population avec une chambre Neubauer ou CO2 Une analyse on a utilisé des méthodes analytiques complémentaires.
L'étape de fermentation anaérobie est effectuée dans une fermentation à l aide de trois réservoirs avec plusieurs prises d'échantillons des installations. Pour des conditions optimales de fonctionnement, la cuve de fermentation subit des contrôles de température et le régime est régulé par un agitateur. Comme matière première, l'extrait aqueux à partir du test d'extraction a été utilisé dans chaque lot. Avant l'addition de cet extrait aqueux dans la cuve de fermentation, des résidus solides ont été éliminés en utilisant un tamis vibrant ayant une taille de maille de 0,5 mm. Après cela, le phosphate d'ammonium (3,2 g / L), du sulfate de potassium, nous avons ajouté (1 g / L) et de sulfate de magnésium (1,8 g / litre) sous forme inorganique de nutriments sur la solution aqueuse précédente. Ensuite, le pH a été ajusté à 3,5-4, en utilisant l'acide sulfurique dilué. La solution résultante a été stérilisée par chauffage jusqu'à son point d'ébullition puis refroidie à 35°C. Cette solution a été introduite dans le réacteur de fermentation thermostat à 35° C et le mélange réactionnel a été agité 125 tours par minute. Les cellules de S. cerevisiae (15 g / L) ont été utilisées en tant que levure pour le sucre en éthanol converti. L'évolution du procédé de fermentation a été déterminée par la mesure de la densité de l'hydro-alcoolique des solutions obtenues et par chromatographie en phase gazeuse en utilisant une colonne HP-INNOWax (30 m x 0,53 mm x 0,25 lm, Agilent), dans les conditions suivantes: température programme: 28 °C, 6 min; 15 °C / min, 200 °C; 200 °C, 2 min; Division du rapport: 50/1; injecteur: 200 °C; Détecteur: 260 °C. Les monosaccharides et oligosaccharides dans le bouillon de fermentation ont été semi-quantitativeset analysés par HPLC en utilisant une CarboPac PAl-PG1 colonne, un PED, Dionex 2010 i, 6,0 g / L NaOH. La croissance microbienne à l'aide des mesures de la population avec une chambre Neubauer ou CO2 Nous avons utilisé des méthodes analytiques complémentaires.
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Bonjour,La fermentation des solutions aqueuses
L'étape de fermentation anaérobie est effectuée dans une fermentation à l aide de trois réservoirs avec plusieurs prises d'échantillons des installations. Pour des conditions optimales de fonctionnement, la cuve de fermentation subit des contrôles de température et le régime est régulé par un agitateur. Comme matière première, l'extrait aqueux à partir du test d'extraction a été utilisé dans chaque lot. Avant l'addition de cet extrait aqueux dans la cuve de fermentation, des résidus solides ont été éliminés en utilisant un tamis vibrant ayant une taille de maille de 0,5 mm. Après cela, le phosphate d'ammonium (3,2 g / L), du sulfate de potassium, nous avons ajouté (1 g / L) et de sulfate de magnésium (1,8 g / litre) sous forme inorganique de nutriments sur la solution aqueuse précédente. Ensuite, le pH a été ajusté à 3,5-4, en utilisant l'acide sulfurique dilué. La solution résultante a été stérilisée par chauffage jusqu'à son point d'ébullition puis refroidie à 35°C. Cette solution a été introduite dans le réacteur de fermentation thermostat à 35° C et le mélange réactionnel a été agité 125 tours par minute. Les cellules de S. cerevisiae (15 g / L) ont été utilisées en tant que levure pour le sucre en éthanol converti. L'évolution du procédé de fermentation a été déterminée par la mesure de la densité de l'hydro-alcoolique des solutions obtenues et par chromatographie en phase gazeuse en utilisant une colonne HP-INNOWax (30 m x 0,53 mm x 0,25 lm, Agilent), dans les conditions suivantes: température programme: 28 °C, 6 min; 15 °C / min, 200 °C; 200 °C, 2 min; Division du rapport: 50/1; injecteur: 200 °C; Détecteur: 260 °C. Les monosaccharides et oligosaccharides dans le bouillon de fermentation ont été semi-quantitatives et analysés par HPLC en utilisant une CarboPac PAl-PG1 colonne, un PED, Dionex 2010 i, 6,0 g / L NaOH. La croissance microbienne à l'aide des mesures de la population avec une chambre Neubauer ou CO2
Nous avons utilisé des méthodes analytiques complémentaires.